Гени-кандидати, SNP яких залучені до патогенезу бронхіальної астми: ORMDL3. Бронхіальна астма (БА) є полігенним захворюванням, з яким асоційовані варіанти мутацій більше ніж 40 генів [65]. Визначення специфічних однонуклеотидних поліморфізмів (single nucleotid poymorphysms — SNP) є вкрай актуальним завданням сучасної алергології та медичної генетики. У дослідженні L. Akhabir та ін. [7] була визначена група генів, які потенційно мають найвищу асоціацію з БА (ORMDL3, PDE4D, DENND1B). Інше великомасштабне дослідження GWAS підтвердило, що ORMDL3, як один із генів, має найвищу асоціацію з БА та визначає декілька інших, включаючи IL1RL1/IL18R1, HLA-DQ, IL33, SMAD3 [36]. A.S. Tulah та ін. [57] застосували двошаровий підхід, за допомогою якого були підібрані декілька SNP із причинної групи дітей кавказької (європеоїдної) популяції, що відповідали критеріям значущості GWAS: ORMDL3/GSDMB, IL33, IL18R/IL1RL1, SMAD3, IL2RB, PDE4D, CRB1 та RAD50. Ділянка 17q21, що містить в собі гени ORMDL3 та GSDML, специфічно асоційована з ризиком дитячої БА [40]. Важливою визначена залежність SNP гена ORMDL3 від віку початку БА, з максимальною асоціацією при виникненні у дитячому віці [37]. У метааналізі H. Shi та ін. [52] за моделлю «випадок — контроль» було опубліковано результати аналізу 6462 випадків БА та 7357 конт–рольних випадків. Було вказано, що SNP rs7216389 гена ORMDL3 був значуще асоційований з підвищеним ризиком БА в усієї досліджуваної популяції. Аналіз вікових підгруп вказав на значущу асоціацію розвитку БА у дітей та rs7216389. Було зроблено висновок, що SNP rs7216389 гена ORMDL3 асоційований зі схильністю до БА. Діти з алельним варіантом T (TT або TC) у локусі rs7216389 є групою високого ризику розвитку БА [52]. Ці дані доводять доцільність дослідження SNP гена ORMDL3 на локальних популяціях, зокрема українській.
Гени-кандидати, SNP яких залучені до патогенезу бронхіальної астми: IL1RL1. Ген інтерлейкін-1-подібного рецептора (IL1RL1), також відомий як ST2, є перспективним геном-кандидатом для БА та атопії. Він розташований у регіоні 2q12 і знаходиться у кластері генів IL1: інтерлейкін-1-рецептор-2, (IL1R2), інтерлейкін-1-рецептор-1 (IL1R1), інтерлейкін-1-подібний рецептор-2 (IL1RL2), інтерлейкін-18-рецептор-1 (IL18R1), інтерлейкін-18-рецептор-аксесорний протеїн (IL18RAP). Рецептор IL1RL1 є членом суперсімейства тол-інтерлейкін-1-рецепторів (TIR), розташований на тучних клітинах, Т-хелперах 2-го типу (Th2), регуляторних Т-клітинах, макрофагах, а також присутній у сироватці крові в розчинній формі. Рецептор IL1RL1 зв’язує IL-33 та посилює його роль через каскадні шляхи запалення TLR. Різні форми IL1RL1 можуть підсилювати чи пригнічувати Th2-віповіді. Функціональна генетика локусу IL1RL1 асоційована з ключовими ідентифікованими SNP. Вони включають поліморфізми, які змінили залишки амінокислот ST2, що можуть впливати на продукцію IL33 та ST2, забезпечуючи гіпотетичний механізм розвитку АХ [23]. До речі, за даними N.E. Reijmerink та ін., SNP, розташовані у гені IL1RL1, асоційовані з атопічним дерматитом (АД) [49, 50].
У європейському дослідженні GABRIEL Consortium пацієнти з БА мали сильну асоціацію 6 генів, з яких 3 (IL33, ST2 та IKZF3-ZPBP2-GSDMB-ORMDL3-регіон на хромосомі17q21) були репліковані у EVE Consortium [56]. Незалежні GWAS забезпечили подальшу підтримку для тих самих локусів-кандидатів. Ген IL1RL1 продемонстрував найпотужнішу асоціацію з алергічним запаленням (P = 1,4 • 10−8) [43]. Отже, можна стверджувати про велику перспективу дослідження SNP гена IL1RL1 як однієї з важливих ланок алергічного запалення при розвитку атопічного маршу (АМ) у дітей.
Роль каскаду IL1RL1 та IL-33 у розвитку алергічної хвороби у дітей. У дослідженні O.E. Savenije та ін. вивчалися асоціації між поліморфізмами генів –IL-33-IL1RL1-каскаду в розвитку алергічної хвороби (АХ) у дитячому віці та імунних механізмів, включаючи Т-регуляторні клітини, що лежать в основі АХ у дітей [51]. Візинг (wheeze — хрип) із початком у дошкільному віці був асоційований з SNP у декількох генах сигнального каскаду IL33-IL1RL1, що було визначено після застосування корекційних тестів у мета-аналізі: 2 SNP (rs4742170 та rs7037276) гена IL33, 1 SNP (rs10513854) гена IL1RAP та 1 SNP (rs5030411) гена TRAF6. Візинг, що почався у підлітковому віці, був асоційований з 2 SNP IL1RL1 (rs10208293 та rs13424006); персистуючий візинг був асоційований з 1 SNP (rs1342326) гена IL33 та 1 SNP (rs9290936) гена IL1RAP. SNP генів IL33 та IL1RL1 були номінально асоційовані з БА. SNP rs928413 та rs1342326 гена IL33 можуть підвищувати ризик виникнення сезонного атопічного риніту/атопічного ринокон’юнктивіту (АР/АРК) від віку в 6 років. Отже, можна зробити висновок, що поліморфізми гена IL33 впливають на схильність до БА. IL-33 опосередковано індукує Th2-імунну відповідь, що є важливою ланкою у механізмі розвитку АХ. Більше того, IL-33 стимулює Т-регуляторні клітини (Treg), які є критично важливими для здорового імунного гомеостазу. Зниження вмісту Treg-клітин і підвищення супресора цитокінового сигналювання 3 (SOCS3) у комбінованих гомозигот і гомозигот за мінорною алеллю може співвідноситися з розвитком сезонного АР/АРК, вказуючи на дисбаланс імунної регуляції та недостатній контроль за алергічним запаленням [53].
Вищенаведені дані вказують на значущість IL33/IL1RL1 в розвитку АД, БА, алергічної сенсибілізації та рівня еозинофілії крові, вказуючи на необхідність подальшого зрозуміння ролі цього сигнального каскаду для нових терапевтичних можливостей в лікуванні АХ [47, 51, 53].
Однонуклеотидні поліморфізми генів рецепторів до глюкортикостероїдів у розвитку алергічного запалення при алергічній хворобі у дітей. У світі сучасних досліджень з вивчення ролі експресії генів у розвитку та маніфестації БА інтерес викликають дослідження щодо вивчення SNP генів рецепторів до глюкокортикостероїдів (NR3C1/hr-NR31, ядерне рецепторне субсімейство 3, група С, член 1 (глюкокортикостероїдний рецептор — ГКСР) при стероїд-резистентних і важко виліковних формах БА й інших АХ [16]. Ці структурні мутації нуклеотидів можуть призводити до зниження кількості та чутливості ГКСР у шкірі та слизових оболонках і до підвищеного синтезу IgE.
Ген NR3C1 кодує синтез ГКСР, який має дві функції: як фактор транскрипції зв’язується з елементами відповіді на глюкокортикостероїди (ГКС) у промотерах генів відповіді на ГКС та активує їхню транскрипцію й є регулятором інших факторів транскрипції. Даний рецептор типово знаходиться у цитоплазмі та при зв’язуванні з лігандами транспортується до ядра клітини. Далі має місце наступний механізм: активований ядерно-розташований GR зв’язується з інтерактивним протеїном-1 глюкокортикоїдного рецептора, коактиватором-1 стероїдного рецептора, коактиваторами факторів транскрипції CBP, p300/CBP, PCAF та глюкокортикостероїдним cis-елементом (GRE), 5'-TGTACAnnnTCTTGT-3' (де n — будь-який нуклеотид) промотора стероїд-сенситивних генів [1]. Він бере участь у реалізації запальної відповіді, клітинної проліферації та диференціації у цільових тканинах. Мутації цього гена асоційовані з генералізованою резистентністю до ГКС. Альтернативний сплайсинг (від англ. splice — з’єднувати, зрощувати) цього гена призводить до транскриптних варіантів, які кодують однакові або різні ізоформи рецепторів ГКС. Додаткові ізоформи, що походять від використання альтернативних ділянок ініціації трансляції, також описані і мають своє функціональне значення, являючи собою різні моделі трафіка сигналів із цитоплазми до ядра та визначену транскрипційну активність. Повна резистентність до ГКС — рідке явище, за оцінками, воно вражає 1 : 1000 пацієнтів з БА. Зараз розрізняють два типи резистентності до ГКС: 1-й тип — резистентність, індукована цитокінами, та 2-й тип — резистентність, асоційована з поліморфізмами гена NR3C1 [44, 45]. Виникнення SNP проявляється у різноманітті ефекторих молекул, які кодує даний ген. Поліморфічні зміни, що спостерігаються у рестрикційних фрагментах N363S та ER22/23EK (RFLP, Restriction Fragment Length Polymorphism; ППРФ — подвоєний поліморфізм рестрикційних фрагментів), знаходяться у кодуючих і регуляторних регіонах гена NR3C1, викликаючи зміни синтезу та/або функції ГКС-рецептора. Це, беззаперечно, впливає на фенотипові характеристики БА, що може мати асоціацію з частковою або повною резистентністю до протизапальних ліків, зокрема ГКС. Як наслідок, виникають персистенція запалення у дихальних шляхах, більш часті загострення, синдром бронхіальної обструкції, погіршення якості життя пацієнтів — тобто вихід БА зі стану контрольованості [44, 45]. Визначення асоціації цього SNP з нозологічними формами АМ дозволить призначати більш персоналізовану терапію АХ у дітей.
Новітні сигнальні каскади, SNP яких залучені до патогенезу алергічної хвороби. Нещодавні GWAS та їх метааналізи почали проливати світло на типові та нові сигнальні каскади, що беруть участь у розвитку АХ, зокрема БА. Асоціації з поліморфізмами у генах, які кодують епітеліальні клітинні цитокіни, тимічний стромальний лімфопротеїн (TSLP), підкреслюють центральну роль вродженого імунітету, ланки, яка промотує зв’язування Th2-клітин у патогенезі АХ, зокрема БА. Найбільш багатообіцяючим з наведених є SNP гена TSLP, роль якого має бути досліджена як при АД, так і при АР/АРК і БА у дітей.
Новітні гени-кандидати, асоційовані з алергічною хворобою у дітей: асоціація SNP гена PDCD4 та ступенів тяжкості бронхіальної астми у дітей. Протягом останнього десятиріччя проведені GWAS з вивчення фенотипів БА пролили світло на нові уявні каскади запалення та нові списки цільових локусів астма-асоційованих генів [68]. Дослідження щодо БА у дітей тяжкого персистуючого ступеня вказали на роль SNP (rs6585018:G>A) гена запрограмованої клітинної смерті 4 (PCDC4) у розвитку алергічного запалення, виявили 3 SNP (rs6585018:G>A, rs1322997:C>A та rs34104444:G>A) у гені PDCD4, які були значно асоційовані з дитячою БА 4-го ступеня, підвищенням загального IgE [10]. У незалежній групі, до якої увійшли 234 хворі на БА дитини та 652 дитини контрольної групи, SNP rs1407696:T>G та rs11195360:T>C гена PDCD4 були асоційовані з підвищенням рівня загального IgE (значення P: 0,006; 0,014 відповідно). В silico аналізі PDCD4-локуса визначено, що rs6585018:G>A мав потенціал впливати на транскрипцію MYB, який функціонував як індуктор транскрипції PDCD4. Аналізи зсуву електромобільності визначили, що rs6585018:G>A змінює зв’язування MYB, впливаючи на експресію гена PDCD4. SNP гена MYB як такі викликають схильність до атопії та БА. Виявлена асоціація між варіантом поліморфізму MYB-зв’язуючого домену PDCD4 та найтяжчою формою дитячої БА вказує на те, що PDCD4 є новою молекулою, важливою в механізмі розвитку астматичної запальної відповіді.
Маркери-кандидати для оцінки ступеня тяжкості перебігу алергічної хвороби у дітей. У дітей, хворих на АД, суттєво підвищується рівень IL-31 порівняно з дітьми без атопічних захворювань [48]. У вищезгаданому дослідженні встановлена вірогідна кореляція між рівнем IL-31, індексом SCORАD та інтерлейкінами IL-4, IL-13. Також визначена гіперекспресія мРНК IL-31 у дітей з АД та іншими алергічними захворюваннями шкіри, одним із факторів якої виявилися суперантигени шкірних стафілококів. Важливим є відсутність кореляції між рівнями –IL-31 та загального IgE, що пояснюється продукцією –IL-31 CD45R0+T-клітинами, а не В-лімфоцитами.
Останніми роками встановлено, що в розвитку алергічного запалення при АД важливу роль відіграють тимус, активацією регульований хемокін (thymus and activation regulated chemokine — TARC/CCl17, англ.) та шкірний Т-атрактивний хемокін (cutaneous T-cell arttracting chemokine, CTAC/CCL27, англ.), сироваткові концентрації якого були значно вищими у дітей з АД, ніж у здорових дітей [54]. E. Machura та ін. знайшли позитивну кореляцію між індексом SCORAD, рівнем сироваткового загального IgE, концентрацією еозинофілів і концентрацією TARC та CTAC. Рівні сироваткового TARC та кількості еозинофілів значно корелюють один з одним, проте ширший інтервал рівнів TARC здається більш клінічно корисним для моніторування ступеня тяжкості АД. Отже, можна зробити висновок, що рівень сироваткового TARC є дуже чутливим біомаркером для моніторування ступеня тяжкості та відповіді на лікування у хворих на АД [67]. Визначення його серед української педіатричної популяції дозволить точніше контролювати ефективність лікування АХ.
Метаболізм вітаміну D та алергічної хвороби у дітей. Системний аналіз Европейської академії алергології та клінічної імунології (European Academy of Allergology and Clinical Immunology — EAACI) показав 1,6–24,2 % підтверджених випадків хронічної алергії (ХА) у дітей віком 6–17 років. Важливого значення при цьому набуває дефіцит 25-гідроксикальциферолу (вітаміну D3), знижений рівень якого у сироватці крові має обернений кореляційний зв’язок з підвищеним рівнем IgE [61]. У 2014 році S.S. Wang та ін. доповіли результати дослідження, в якому знай–шли протективну роль SNP rs4674343 гена вітаміну D стосовно АД у дітей. Інші гени (CYP2R1 та VDR (вітамін-D-рецептор)) при дослідженні виявили вірогідний ефект з підвищення рівня еозинофілів і продукції загального IgE [61]. Був встановлений прямий зв’язок між дефіцитом вітаміну D3 та рівнем атопії у дітей. Такі знахідки можуть пояснюватися тим, що 1α25(ОН)-кальциферол підвищує експресію in vitro кателіцидину та антимікробну активність у кератиноцитах, які допомагають підтримувати бар’єрну функцію шкіри [61].
Проте дослідники Generation R Study [20] не знайшли асоціацію між сироватковими рівнями 25-гідроксивітаміну D при народженні та типовим АД або АД у дітей віком до 4 років. Тому автори дослідження припускають, що генетичні фактори та фактори навколишнього середовища у комбінаційній взаємодії впливають на запуск механізму патогенезу АД у дітей. У той же час A. Boonstra та ін. [8] на мишачих моделях продемонстрували, що вітамін D інгібує продукцію IFN-γ та промотує продукцію –IL-4, IL-5, IL-10. S.A. Lee та ін. [29] і M.S. Mohiuddin та ін. [35] у 2013 році продемонстрували обернений кореляційний зв’язок між рівнями сироваткового 25(ОН)D та клінічними проявами АД у дитячих популяціях з сенсибілізацією до харчових алергенів. Також у 2013 році A. Аkan та ін. [5] продемонстрували обернену кореляцію між значенням індексу SCORAD та сироватковим рівнем вітаміну D у дітей з алергічною сенсибілізацією, тоді як у здорових індивідуумів з контрольної групи без сенсибілізації цієї кореляції зафіксовано не було. K.-E. Kim та ін. [24] у системному огляді та метааналізі виявили, що рівні вітаміну D та його метаболітів не асоційовані з розвитком АХ, у той же час зниження рівня вітаміну D мало асоціацію з частішою захворюваністю на АХ саме у дітей. Також автори цього дослідження дійшли висновку, що у дослідженні щодо трьох баз даних (MEDLINE — з 01.01.1976 до 30.04.2015, EMBASE — з 01.01.1985 до 30.04.2015, Cochrane Central Register of Controlled Trials — з 01.01.1987 до 30.04.2015) не було знайдено переконливих даних з лікування препаратами вітаміну D для попередження розвитку АХ у дітей.
На контрасті з вищезазначеними даними, M. Vestita та ін. (2015) у своєму оглядовому дослідженні щодо ролі вітаміну D при АД у дитячому віці стверджують про позитивну роль вітаміну D при АД, базуючись на фундаментальних дослідженнях щодо впливу вітаміну D на численні клітинні функції [59].
Тим не менш, як ця молекула може впливати на процес травлення та прояви АД і інших АХ у дітей — це предмет розуміння для подальших міждисциплінарних досліджень, що мають бути проведені у дітей, хворих на АХ.
Новітні підходи до розуміння механізмів алергії та алергічної хвороби у дітей. Важливу роль у розвитку атопії як імуноклінічного феномена відіграють пренатальні фактори: спосіб життя та дієта вагітної жінки, експозиція до тютюнового диму та антибіотиків, наявність у батьків SNP за генами, які кодують синтез рецепторів і медіаторів алергічного запалення. Вагітність, у імунологічному розумінні, це Th2-медійований процес, якій реалізується через посилення синтезу IL-4, -10, -13 та TGF-β, що знижує материнську Th1-відповідь на фетоплацентарні антигени й є фактором забезпечення виношування вагітності [62]. Далі вплив на імунітет новонародженого переймають інтранатальні фактори: вагінальні пологи та вакцинація з перших днів життя, раннє прикладення до грудей, що сприяє швидкому заселенню кишечника новонародженої дитини, приводять до більш швидкого вирівнювання Th2/Th1-балансу. До того ж, з позицій епігенетики, фактори оточуючого середовища, зокрема, раціон дитини на першому, другому та третьому роках життя, матернальна алергія впливають на експресію генів алергічного запалення та їх антагоністів, не змінюючи послідовність ДНК, тобто не викликаючи SNP.
При наявності SNP ступінь їх клінічної маніфестації залежить від способу життя дитини — якісний і кількісний склад раціону харчування, що впливає на шлунково-кишковий тракт і через нього активує ланцюг реакцій алергічного запалення. Це так званий інтерактивний ефект оточуючого середовища [69], який також є реальним фактором ризику або профілактики виникнення харчової алергії.
Тому, на нашу думку, більш ефективним підходом до АМ у дітей має стати системний погляд на хворобу з урахуванням асоціацій зі змінами генотипу в окремого пацієнта — SNP. Одночасно треба враховувати індивідуальний метаболізм холекальциферолу (вітамін D3) та новітні маркери тяжкості перебігу АХ у дітей, що надасть можливість вирішити актуальне завдання сучасної педіатрії з персоналізації діагностичного процесу, лікування та профілактики АХ у окремої дитини.
Висновки
1. Кожен випадок АХ (АД, АР, АРК, БА) — це персональна генотип-асоційована комбінація механізмів патогенезу хвороби, що потребує системного персоналізованого підходу до діагностики, лікування та прогнозу хвороби.
2. Розвиток сенсибілізації при АХ у дітей пов’язаний з комбінацією однонуклеотидних поліморфізмів генів сигнальних та ефекторних молекул, які беруть участь у різних ланках алергічного запалення на шкірі, слизових оболонках очей і дихальних шляхів.
3. Центральна роль у розвитку АД як першої нозологічної форми АМ у дітей раннього віку належить SNP FLG, що підтверджується GWAS та потребує локального вивчення на українській педіатричній популяції.
4. Дослідження ролі SNP у розвитку АХ, отриманих у GWAS, на українській педіатричній популяції дозволить створити персоналізований генотип-асоційований підхід до діагностики АХ у дитячого населення України.
5. Перспективним напрямком персоналізованого лікування АХ у дітей є застосування препаратів вітаміну D3 на основі виключення генотип-асоціацій з SNP рецепторів до 1α25(ОН)-кальциферолу.
Конфлікт інтересів. Автор заявляє про відсутність конфлікту інтересів при підготовці даної статті.
Список литературы
1. Абатуров А.Е. Медикаментозное управление течением бронхиальной астмы у детей. Настоящее и будущее (Часть I) // Здоровье ребенка. — 2008. — № 5(14). — С. 145-150.
2. Абатуров А.Е. Медикаментозное управление течением бронхиальной астмы у детей. Настоящее и будущее (Часть II) // Здоровье ребенка. — 2008. — № 6(15). — С. 80-86.
3. Волосовець О.П., Досенко В.Є., Кривопустов С.П., Павлик О.П., Ємець О.В., Строй Д.О. Функціональне значення однонуклеотидного поліморфізму (RS11204981) в гені філагрину (FLG) для лікування бронхіальної астми у дітей з атопічним дерматитом // Здоровье ребенка. — 2015. — № 1(60). — С. 14-18.
4. Куценко Н.Л., Ізмайлова О.В., Весніна Л.Е., Кайдашев І.П. Спектр алерген-специфічних IgE серед полтавської популяції та залежність їх синтезу від наявності поліморфізмів Toll-подібних рецепторів // Одеський медичний журнал. — 2014. — № 3. — С. 9-14.
5. Akan A., Azkur D., Ginis T. et al. Vitamin D level in children is correlated with severity of atopic dermatitis but only in patients with allergic sensitizations // Pediatric Dermatology. — 2013. — Vol. 30, № 3. — P. 359-363. doi: 10.1111/pde.12058.
6. Ahmad-Nejad P., Mrabet-Dahbi S., Breuer K., Klotz M., Werfel T., Herz U., Heeg K., Neumaier M., Renz H. The toll-like receptor 2 R753Q polymorphism defines a subgroup of patients with atopic dermatitis having severe phenotype // J. Allergy Clin. Immunol. — 2004 Mar. — Vol. 113(3). — P. 565-7. PMID: 15007364.
7. Akhabir L., Sandford A.J. Genome-wide association studies for discovery of genes involved in asthma // Respirology. — 2011. — Vol. 16. — P. 396-406. doi: 10.1111/j.1440-1843.2011.01939.x.
8. Boonstra A., Barrat F.J., Crain C., Heath V.L., Savel–koul H.F.J., O’Garra A. 1α,25-Dihydroxyvitamin D3 has a direct effect on naive CD4+ T cells to enhance the development of Th2 cells // Journal of Immunology. — 2001. — Vol. 167, № 9. — P. 4974-4980. 10.4049/jimmunol.167.9.4974.
9. Bin L., Leung D.Y.M. Genetic and epigenetic studies of atopic dermatitis. Allergy, Asthma, and Clinical Immunology // Official Journal of the Canadian Society of Allergy and Clinical Immuno–logy. — 2016. — Vol. 12. — P. 52. doi: 10.1186/s13223-016-0158-5.
10. Binia A., Van Stiphout N., Liang L. et al. A Polymorphism Affecting MYB Binding within the Promoter of the PDCD4 Gene is Associated with Severe Asthma in Children // Hum. Mutat. 2013 Aug. — Vol. 34(8). — P. 1131-1139. doi: 10.1002/humu.22340.
11. Brandt E.B., Gibson A.M., Bass S., Rydyznski C., Khurana Hershey G.K. Exacerbation of allergen-induced eczema in TLR4 and TRIF deficient mice is mediated by TRIF // Journal of immunology (Baltimore, Md : 1950). 2013. — Vol. 191(7). — P. 3519-3525. doi: 10.4049/jimmunol.1300789.
12. Brown P., Bindukumar Nair, Supriya D. Mahajan et al. Single nucleotide polymorphisms (SNPs) in key cytokines may modulate food allergy phenotypes // Eur. Food Res. Technol. — 2012 Nov. — Vol. 235(5). — P. 971-980. doi: 10.1007/s00217-012-1827-3.
13. Brown S.J., Asai Y., Cordell H.J., Campbell L.E., Zhao Y., Liao H. et al. Loss-of-function variants in the filaggrin gene are a significant risk factor for peanut allergy // J. Allergy Clin. Immunol. — 2011. — Vol. 127. — P. 661-667.
14. Brown S.J., McLean W.H. One remarkable molecule: filaggrin // J. Invest. Dermatol. — 2012. — Vol. 132(3), Pt. 2. — P. 751-62. doi: 10.1038/jid.2011.393.
15. Bussmann C., Weidinger S., Novak N. Genetics of atopic dermatitis. JDDG // Journal der Deutschen Dermatologischen Gesellschaft. — 2011. — Vol. 9. — P. 670-676. doi: 10.1111/j.1610-0387.2011.07656.x.
16. de Lange P., Koper J.W., Brinkmann A.O., de Jong F.H., Lamberts S.W. Natural variants of the beta isoform of the human glucocorticoid receptor do not alter sensitivity to glucocorticoids // Mol. Cell. Endocrinol. — 1999 Jul 20. — Vol. 153(1–2). — P. 163. PMID: 10459864.
17. Esparza-Gordillo J., Weidinger S., Folster-Holst R. et al. A common variant on chromosome 11q13 is associated with atopic dermatitis // Nat. Genet. — 2009. — Vol. 41. — P. 596-601. doi: 10.1038/ng.347.
18. Flohr C., Mann J. New insights into the epidemiology of childhood atopic dermatitis // Allergy. — 2014. — Vol. 69. — P. 3-16. doi: 10.1111/all.12270.
19. Galli E., Ciucci A., Cersosimo S. et al. Eczema and food allergy in an Italian pediatric cohort: no association with TLR-2 and TLR-4 polymorphisms // Int. J. Immunopathol. Pharmacol. — 2010 Apr-Jun. — Vol. 23(2). — P. 671-5.
20. Gazibara T., Elbert N.J., den Dekker H.T. et al. Associations of maternal and fetal 25-hydroxyvitamin D levels with childhood eczema: The Generation R Study // Pediatr. Allergy Immunol. — 2016. — Vol. 27. — P. 283-289.
21. Greisenegger E.K., Zimprich F., Zimprich A., Gleiss A., Kopp T. Association of the chromosome 11q13.5 variant with atopic dermatitis in Austrian patients // Eur. J. Dermatol. — 2013 Apr. — Vol. 1, № 23(2). — P. 142-5. doi: 10.1684/ejd.2013.1955.
22. Heimall J., Spergel J.M. Filaggrin mutations and atopy: consequences for future therapeutics // Expert. Rev. Clin. Immunol. — 2012. — Vol. 8. — P. 189-97. doi: 10.1586/eci.11.100.
23. Ho J.E., Chen W.Y., Chen M.H. et al. Common genetic variation at the IL1RL1 locus regulates IL-33/ST2 signaling // J. Clin. Invest. — 2013 Oct. — Vol. 123(10). — P. 4208-18. doi: 10.1172/JCI67119.
24. Kim Y.H., Kim K.W., Kim M.J. et al. Vitamin D levels in allergic rhinitis: a systematic review and meta-analysis // Pediatr. Allergy Immunol. — 2016. — Vol. 27. — P. 580-590. doi: 10.1111/pai.12599.
25. Kormann M.S., Ferstl R., Depner M., Klopp N., Spiller S., Illig T., Vogelberg C. et al. Rare TLR2 mutations reduce TLR2 receptor function and can increase atopy risk // Allergy. — 2009 Apr. — Vol. 64(4). — P. 636-42. doi: 10.1111/j.1398-9995.2008.01891.x.
26. Kuo I.H., Carpenter-Mendini A., Yoshida T., McGirt L.Y., Ivanov A.I., Barnes K.C. et al. Activation of epidermal toll-like receptor 2 enhances tight junction function: implications for atopic dermatitis and skin barrier repair // J. Invest. Dermatol. — 2013. — Vol. 133. — P. 988-98. doi: 10.1038/jid.2012.437.
27. Kuo I.H., Yoshida T., De Benedetto A., Beck L.A. The cutaneous innate immune response in patients with atopic dermatitis // J. Allergy Clin. Immunol. — 2013 Feb. — Vol. 131(2). — P. 266-78. doi: 10.1016/j.jaci.2012.12.1563.
28. Kurowski M., Majkowska-Wojciechowska B., Wardzyńska A., Kowalski M.L. Associations of allergic sensitization and clinical phenotypes with innate immune response genes polymorphisms are modified by house dust mite allergen exposure // Arch. Med. Sci. — 2011. — Vol. 7. — P. 1029-1036.
29. Lee S.A., Hong S., Kim H.J., Lee S.H., Yum H.Y. Correlation between serum vitamin D level and the severity of atopic dermatitis associated with food sensitization // Allergy, Asthma & Immunology Research. — 2013. — Vol. 5, № 4. — P. 207-210.
30. Lun S.W., Wong C.K., Ko F.W., Hui D.S., Lam C.W. Expression and functional analysis of toll-like receptors of peripheral blood cells in asthmatic patients: implication for immunopathological mechanism in asthma // J. Clin. Immunol. — 2009 May. — Vol. 29(3). — P. 330-42. doi: 10.1007/s10875-008-9269-1.
31. Månsson A., Fransson M., Adner M., Benson M., Uddman R., Björnsson S., Cardell L.O. TLR3 in human eosinophils: functional effects and decreased expression during allergic rhinitis // Int. Arch. Allergy Immunol. — 2010. — Vol. 151(2). — P. 118-28. doi: 10.1159/000236001.
32. Marenholz I., Esparza-Gordillo J., Rüschendorf F., Bauerfeind A., Strachan D.P., Spycher B.D., Baurecht H. et al. Meta-ana–lysis identifies seven susceptibility loci involved in the atopic march // Nat. Commun. — 2015 Nov 6. — Vol. 6. — P. 8804. doi: 10.1038/ncomms9804.
33. Martino D. et al. Epigenome-wide association study reveals longitudinally stable DNA methylation differences in CD4+ T cells from children with IgE-mediated food allergy / Martino D., Joo J.E., Sexton-Oates A., Dang T., Allen K., Saffery R., Prescott S. // Epigenetics. — 2014 Jul. — Vol. 9(7). — P. 998-1006. doi: 10.4161/epi.28945.
34. Miedema K.G., Tissing W.J., Te Poele E.M., Kamps W.A., Alizadeh B.Z., Kerkhof M., de Jongste J.C. et al. Polymorphisms in the TLR6 gene associated with the inverse association between childhood acute lymphoblastic leukemia and atopic disease // Leukemia. — 2012. — Vol. 26. — P. 1203-1210. doi: 10.1038/leu.2011.341.
35. Mohiuddin M.S., Curran-Everett D., Leung D.Y.M. Vitamin D and food allergy in patients with severe atopic dermatitis // Journal of Allergy and Clinical Immunology. — 2013. — Vol. 132, no. 4. — Р. 1011. doi: 10.1016/j.jaci.2013.06.039
36. Moffatt M.F., Gut I.G., Demenais F. et al. GABRIEL Consortium. A large-scale, consortium-based genome-wide association study of asthma // N. Engl. J. Med. — 2010 Sep 23. — Vol. 363(13). — P. 1211-21. doi: 10.1056/NEJMoa0906312.
37. Moffatt M.F., Kabesch M., Liang L. et al. Genetic variants regulating ORMDL3 expression contribute to the risk of childhood asthma // Nature. — 2007 Jul 26. — Vol. 448(7152). — P. 470-3. doi:10.1038/nature06014.
38. Møller-Larsen S., Nyegaard M., Haagerup A., Vestbo J., Kruse T.A., Børglum A.D. Association analysis identifies TLR7 and TLR8 as novel risk genes in asthma and related disorders // Thorax. — 2008 Dec. — Vol. 63(12). — P. 1064-9. doi: 10.1136/thx.2007.094128.
39. Niebuhr M., Langnickel J., Draing C., Renz H., Kapp A., Werfel T. Dysregulation of toll-like receptor-2 (TLR-2)-induced effects in monocytes from patients with atopic dermatitis: impact of the TLR-2 R753Q polymorphism // Allergy. — 2008 Jun. — Vol. 63(6). — P. 728-34. doi: 10.1111/j.1398-9995.2008.01721.x.
40. Ober C., Yao T.-C. The Genetics of Asthma and Allergic Disease: A 21st Century Perspective // Immunological. Reviews. — 2011. — Vol. 242(1). — P. 10-30. doi: 10.1111/j.1600-065X.2011.01029.x.
41. Ono J.G., Worgall T.S., Worgall S. 17q21 locus and ORMDL3: an increased risk for childhood asthma // Pediatr. Res. — 2014 Jan. — Vol. 75(1–2). — P. 165-70. doi: 10.1038/pr.2013.186.
42. O`Regan G.M., Campbell L.E., Cordell H.J., Irvine A.D., McLean W.H., Brown S.J. Chromosome 11q13.5 variant associated with childhood eczema: an effect supplementary to filaggrin mutations // J. Allergy Clin. Immunol. — 2010 Jan. — Vol. 125(1). — P. 170-4. — e1-2. doi: 10.1016/j.jaci.2009.10.046.
43. Ortiz R.A., Barnes K.C. Genetics of Allergic Diseases // Immunology and allergy clinics of North America. — 2015. — Vol. 35(1). — P. 19-44. doi: 10.1016/j.iac.2014.09.014.
44. Panek M., Pietras T., Antczak A., Górski P., Kuna P., Szemraj J. The role of functional single nucleotide polymorphisms of the human glucocorticoid receptor gene NR3C1 in Polish patients with bronchial asthma // Molecular Biology Reports. — 2012. — Vol. 39(4). — P. 4749-4757. doi:10.1007/s11033-011-1267-3.
45. Panek M., Pietras T., Kupryś-Lipińska I., Górski P., Kuna P., Szemraj J. The analysis of the factors influencing the development of glucocorticoid resistance in the etiopathogenesis of severe bronchial asthma // Postepy Biochem. — 2010. — Vol. 56(4). — P. 373-82. PMID: 21473041.
46. Paternoster L., Standl M., Chen C.M., Ramasamy A., Bønnelykke K., Duijts L., Ferreira M.A. et al. Meta-analysis of genome-wide association studies identifies three new risk loci for atopic dermatitis // Nat. Genet. — 2011 Dec 25. — Vol. 44(2). — P. 187-92. doi: 10.1038/ng.1017.
47. Portelli M.A., Hodge E., Sayers I. Genetic risk factors for the development of allergic disease identified by genome-wide association // Clinical and Experimental Allergy. — 2015. — Vol. 45(1). — P. 21-31. doi:10.1111/cea.12327.
48. Raap U., Weibmantel S., Gehring M., Eisenberg A.M., Kapp A., Fölster-Holst R. IL-31 significantly correlates with disease activity and Th2 cytokine levels in children with atopic dermatitis // Pediatr. Allergy Immunol. — 2012. — Vol. 23. — P. 285. doi:10.1111/j.1399-3038.2011.01241.x.
49. Reijmerink N.E. A search for missing pieces of the puzzle; the development of asthma and atopy Innate immunity genes and environment. — Groningen, 2009. — doi:10.1111/j.1399-3038.2011.01241.x.
50. Reijmerink N.E., Renske W.B., Bottema M.K. et al. TLR related pathway analysis: novel gene-gene interactions in the development of asthma and atopy. — doi: 10.1111/j.1398-9995.2009.02111.x.
51. Savenije O.E. et al. Association of IL33-IL-1 receptor-like 1 (IL1RL1) pathway polymorphisms with wheezing phenotypes and asthma in childhood // Savenije O.E., Mahachie John J.M., Granell R. et al. // Journal of Allergy and Clinical Immunology. — 2014. — Vol. 134, Is. 1. — P. 170-177. doi: 10.1111/j.1398-9995.2009.02111.x
52. Shi H., Cheng D., Yi L., Huo X., Zhang K., Zhen G. Association between ORMDL3 polymorphism and susceptibility to asthma: a meta-analysis // International Journal of Clinical and Experimental Medicine. — 2015. — Vol. 8(3). — P. 3173-3183. PMCID: PMC4443040.
53. Schröder P.C., Casaca V.I., Illi S. et al. PASTURE Study group. IL-33 polymorphisms are associated with increased risk of hay fever and reduced regulatory T cells in a birth cohort // Pediatr. Allergy Immunol. — 2016.
54. Machura E., Rusek-Zychma M., Jachimowicz M., –Wrzask M., Mazur B., Kasperska-Zajac A. Serum TARC and CTACK concentrations in children with atopic dermatitis, allergic asthma, and urtica–ria // Pediatric. Allergy and Immunology. — 2012. — Vol. 23. — P. 278-284. doi: 10.1111/j.1399-3038.2011.01225.x.
55. Tamari M., Hirota T. Genome-wide association studies of atopic dermatitis // J. Dermatol. — 2014. — Vol. 41. — P. 213-220. doi: 10.1111/1346-8138.12321.
56. Tantisira K.G., Lasky-Su J., Harada M. et al. Genomewide association between GLCCI1 and response to glucocorticoid therapy in asthma // N. Engl. J. Med. — 2011 Sep 29. — Vol. 365(13). — P. 1173-83. doi: 10.1111/1346-8138.12321.
57. Tulah A.S., Holloway J.W., Sayers I. Defining the contribution of SNPs identified in asthma GWAS to clinical variables in asthmatic children // BMC Medical Genetics. — 2013. — Vol. 14. — P. 100. doi: 10.1186/1471-2350-14-100.
58. Turnbull J.L., Adams H.N., Gorard D.A. Review article: the diagnosis and management of food allergy and food intolerances // Alim–ent. Pharmacol. Ther. — 2015. — Vol. 41. — P. 3-25. doi: 10.1111/apt.12984.
59. Vestita M., Filoni A., Congedo M., Foti C., Bonamonte D. Vitamin D and atopic dermatitis in childhood // J. Immunol. Res. — 2015. — Vol. 2015. — P. 257879. doi: 10.1155/2015/257879.
60. Wang I.J., Lin T.J., Kuo C.F., Lin S.L., Lee Y.L., Chen P.C. Filaggrin polymorphism P478S, IgE level, and atopic phenotypes // British Journal of Dermatology. — 2011. — Vol. 164. — P. 791-796. doi: 10.1111/j.1365-2133.2011.10212.x.
61. Wang S.S., Hon K.L., Kong A.P.-S., Pong H.N.-H., Wong G.W.-K., Leung T.F. Vitamin D deficiency is associated with diagnosis and severity of childhood atopic dermatitis // Pediatric Allergy and Immunology. — 2014. — Vol. 25, № 1. — P. 30-35. doi: 10.1111/pai.12167.
62. Warner J. The Early Life Origins of Asthma and Related Allergic Disorders // Archives of Disease in Childhood. — 2004. — Vol. 89(2). — P. 97-102; PMC. Web. 27 Apr. 2017. — PMID: 14736614.
63. Weidinger S., O`Sullivan M., Illig T., Baurecht H., Depner M., Rodriguez E., Ruether A., Klopp N., Vogelberg C., Weiland S.K., McLean W.H., von Mutius E., Irvine A.D., Kabesch M. Filaggrin mutations, atopic eczema, hay fever, and asthma in children // J. Allergy Clin. Immunol. — 2008 May. — Vol. 121(5). — P. 1203-1209. doi: 10.1016/j.jaci.2008.02.014.
64. Weidinger S., Willis-Owen S.A., Kamatani Y., Baurecht H., Morar N., Liang L., Edser P., Street T. et al. A genome-wide association study of atopic dermatitis identifies loci with overlapping effects on asthma and psoriasis // Hum. Mol. Genet. — 2013 Dec 1. — Vol. 22(23). — P. 4841-56. doi: 10.1093/hmg/ddt317.
65. Weiss S.T., Raby B.A., Rogers A. Asthma genetics and geno–mics // Curr. Opin. Genet. Dev. — 2009 Jun. — Vol. 19(3). — P. 279-82. doi: 10.1016/j.gde.2009.05.001.
66. Yang I.A., Holgate S.T., Holloway J.W. Toll-like receptor polymorphisms and allergic disease: interpreting the evidence from genetic studies // Clin. Exp. Allergy. — 2004 Feb. — Vol. 34(2). — P. 163-6. PMID: 14987291.
67. Yasukochi Y., Nakahara T., Abe T., Kido-Nakahara M., Kohda F., Takeuchi S., Hagihara A., Furue M. Reduction of serum TARC levels in atopic dermatitis by topical anti-inflammatory treatments // Asian. Pac. J. Allergy Immunol. — 2014 Sep. — Vol. 32(3). — P. 240-5. doi: 10.12932/AP0419.32.3.2014.
68. Zhang Y., Moffatt M.F., Cookson W.O. Genetic and geno–mic approaches to asthma: new insights for the origins // Curr. Opin. Pulm. Med. — 2012 Jan. — Vol. 18(1). — P. 6-13. doi: 10.1097/MCP.0b013e32834dc532.
69. Zhang G. et al. Maternal Genetic Variants of IL4/IL13 Pathway Genes on IgE with Western or Eastern Environments/Lifestyles // Zhang G., Khoo S.K., Mäkelä M.J. et al. // Allergy Asthma Immunol. Res. — 2014 Jul. — Vol. 6(4). — P. 350-6. doi: 10.4168/aair.2014.6.4.350.
70. Ziyab A.H., Karmaus W., Yousefi M., Ewart S., Schauber–ger E., Holloway J.W. et al. Interplay of filaggrin loss-of-function variants, allergic sensitization, and eczema in a longitudinal study cove–ring infancy to 18 years of age // PLoS ONE. — 2012. — https://doi.org/10.1371/journal.pone.0032721.